硫酸葡聚糖钠盐（分子量：3.6-5万）

描述

• 硫酸葡聚糖钠盐（Dextran sulfate sodium，DSS）是葡聚糖的聚阴离子衍生物，由葡聚糖和别的的酯化反应形成。其中含硫量约为17%，相当于葡聚糖分子的每个葡萄糖残糖中平均含1.9个硫酸基团。DSS具有几个特点：聚阴离子复合物，可溶于水，形成无色水溶液；纯度高，且具有良好的稳定性；可被肠道菌群代谢降解。

• 炎症性肠病（IBD）是慢性、易复发的肠道炎症性疾病，主要包括溃疡性结肠炎（UC）和克罗恩病（CD），病程迁延，增加结直肠癌风险。DSS诱发结肠炎的机制是多方面的。其中一个关键途径是DSS与结肠中的中链脂肪酸（MCFAs）形成约200 nm大小的囊泡结构，这些囊泡能够与结肠上皮细胞膜融合，从而破坏肠道上皮屏障功能。此外，DSS还能直接通过诱导氧化应激、激活炎症信号通路等方式引发肠道炎症。

• DSS结肠炎模型与人类UC在组织病理学、临床表现及炎症机制上高度相似，是IBD研究的经典工具。该模型操作简便、重复性高、灵活可控、成本经济，通过调整DSS浓度与给药周期，可建立急性、慢性及急慢性交替性模型，满足不同药效评价需求。

基本信息

• 外观：白色或类白色至淡黄色粉末

• 可溶性/溶解性：溶于水

应用

• 用于急性结肠炎、慢性结肠炎、结肠炎相关的结肠癌造模。

产品用途

• 本品仅供科研，不得用于其它用途。

使用方法

• 本方案为通用基础指导，仅供实验参考。DSS结肠炎模型的建立受动物品系、周龄、性别、DSS分子量、给药浓度、给药周期及检测终点等多因素影响，不同文献的DSS浓度（1%–5%，w/v）与给药天数（3–10天）差异较大。具体实施时，建议结合多篇文献及预实验结果，依据您的实验目的对DSS浓度、给药周期及采样时间点进行相应调整。

• 动物性别备注：本说明书造模方案默认使用雄性C57BL/6J；若选用雌性C57BL/6J小鼠，同等DSS浓度炎症损伤偏弱，受发情周期干扰，可适当上调DSS浓度，建议增大样本量。

• 一、DSS诱导急性结肠炎模型：

• 致病原理：DSS通过破坏肠道黏膜屏障完整性，激活固有免疫应答及氧化应激反应，诱导以中性粒细胞浸润为主的急性肠道炎症。

• 造模方案：动物为C57BL/6J小鼠，6–8周龄，18-22 g，雄性；给药方式为自由饮用DSS水溶液。

• 浓度风险提示：常规推荐2.5-3%（w/v），连续7天，重复性好，死亡率可控；2.5%-5%为浓度区间，4-5%属于高浓度，文献多用于3-5 d短期造模；若直接5%连续7天，会显著升高小鼠死亡率，不建议新手直接采用。

• 造模成功指标：表型为体重下降10%–20%、腹泻、便血、结肠明显缩短、DAI评分显著升高；病理为H&E染色可见黏膜损伤、隐窝结构破坏、炎性细胞浸润等。取材优先取远端结肠，4%多聚甲醛/10%中性福尔马林固定，制备横断面切片。可检测结肠组织MPO活性、促炎因子TNF-α、IL-6、IL-1β作为炎症辅助评价指标；MPO样本冻存不宜超过1周，活性会衰减。

• DAI评分表：单项评分包括体重下降、粪便性状、出血情况，每项0-4分。DAI =（体重下降评分 + 粪便性状评分 + 便血评分）÷3；DAI最终范围0-4分；每日固定时间打分，盲法最佳，模型组平均DAI建议大于等于2.0。

• 重要实操提示：人道终点为体重下降大于等于20%，同时伴随精神萎靡、严重便血等状态，应严格遵循动物伦理审查方案；DSS给药期间每天同一时间称重+评分；文献存在两套算法，一部分文献直接三项分数相加（0-12分），一部分除以3得到0-4分，论文材料方法必须写明计算公式；应激会改变粪便性状，操作轻柔，不要频繁抓握小鼠。

• HE病理评分（Cooper标准）：包括隐窝结构损伤、炎症细胞浸润、肌层增厚、杯状细胞缺失、隐窝脓肿5个维度，总分0-11分；盲法对远端结肠横断面切片评分；每只动物建议选取大于等于3张非连续切片取平均值；DSS模型隐窝脓肿并不常见，远端结肠损伤最重；模型组病理评分建议大于等于4分。重要提醒：不能只看分数，必须和对照组做统计学比较；DAI是体表表型，HE病理为金标准；还要结合结肠长度等辅助指标；分数仅为参考阈值，不做绝对判定标准。

• 二、DSS诱导慢性结肠炎模型：

• 致病原理：DSS持续作用使肠道黏膜反复受损，免疫调节失衡与肠道微生物群落失调，导致炎症迁延不愈。

• 造模方案：动物为C57BL/6J小鼠，6–8周龄，18-22 g，雄性；给药方式为每个周期7天DSS（2%–3%，w/v）+ 14天正常饮水，重复3个周期。

• 造模成功指标：表型为体重下降、腹泻、便血、脾脏重量增大、结肠缩短；病理为H&E染色可见慢性炎症细胞浸润、隐窝结构破坏、杯状细胞减少等。

• 三、DSS诱导结肠炎相关的结肠癌模型：

• 致病原理：DSS诱导的长期肠道炎症环境会产生大量的炎症因子和氧化应激产物，会对肠道黏膜细胞的DNA造成损伤，引起基因突变，同时使细胞增殖与凋亡失衡，并形成利于肿瘤生长的微环境，进而引发结肠癌。

• 造模方案：动物为C57BL/6J小鼠，6–8周龄，18-22 g，雄性；致癌剂为腹腔注射偶氮甲烷（AOM），剂量10 mg/kg（注意：AOM为致癌试剂，操作需佩戴防护手套；试剂避光现配现用；动物实验设置人道终点）；1周后开始DSS循环（2%–2.5% DSS，7天 + 正常饮水14天，重复3次）。

• 造模成功指标：表型为体重减轻、腹泻、血便及软便、结肠缩短变粗；内镜为第二轮DSS后1周可见远端结肠肿瘤；病理为H&E染色可见肿瘤形成、隐窝脓肿、炎症细胞浸润等。

注意事项

• DSS粉末每次取用后尽快盖紧瓶盖，避免吸潮。溶液用无菌饮用水配制，现配现用，充分混匀。配制后的DSS水溶液4℃存放不超过48 h，不建议长期储存。

• DSS水溶液禁止高压蒸汽灭菌；如需除菌，使用0.22 μm水系滤膜过滤。

• 建议每1-2天更换新鲜DSS溶液，确保浓度稳定并防止细菌污染。

• 建议每天固定时间称重、观察粪便性状和便血情况，保持操作一致性。

• 每日记录饮水量，因饮水量差异可能影响最终造模程度。

• 为减小饮水量个体差异，并便于观察造模进展，建议每笼饲养2–3只小鼠，最多不超过5只。雄性小鼠避免高密度饲养，打斗应激会干扰肠道炎症表型。

• DSS正常是白色至类白色，若色泽显著加深（如深黄、棕黄），可能已氧化降解，不建议使用。

• 造模常见失败排查要点：DAI高但病理评分低，可能取材误取近端结肠或动物处死时间过早；DAI低但病理分数较高，可能个体局部肠道损伤或组内个体差异大；DAI、病理均偏低，可能DSS粉末氧化失效、饮水瓶漏液/堵塞实际摄入不足或本动物房小鼠肠道菌群对DSS耐受，建议提高DSS浓度重新预实验。提示：DSS损伤主要集中远端结肠，病理务必取远端结肠做横断面切片。

储存/保存方法

• 2～8°C密封干燥保存，有效期2年。

运输方式

• 蓝冰运输