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导语：想研究激素抵抗型重症哮喘？用屋尘螨（Dermatophagoides pteronyssinus, Der p）。想研究气道纤维化与重塑？用粉尘螨（Dermatophagoides farinae, Der f）。想模拟临床zui普遍的双重致敏人群？1:1混合。选错尘螨，轻则表型不符，重则结论偏差——本文讲清体外/体内全流程、双螨差异及避坑要点，结合ELV34脂质介质抗炎抗衰老前沿研究，助你一次造模成功。
屋尘螨（Der p）和粉尘螨（Der f）是全球85% 过敏性哮喘患者的主要室内变应原。基于尘螨提取物构建的模型，能同时激活固有免疫 + 适应性Th2/Th17通路，模拟嗜酸/中性粒细胞混合炎症、气道重塑、上皮衰老、激素抵抗等真实病理特征，远优于OVA（卵清蛋白）人工模型。
| 对比维度 | 尘螨模型 | OVA模型 |
|---|---|---|
| 变应原性质 | 天然吸入性，含蛋白酶/LPS/几丁质 | 人工蛋白，需佐剂腹腔致敏 |
| 免疫通路 | Th1/Th2/Th17多通路 | 单纯Th2 |
| 炎症类型 | 嗜酸+中性混合 | 嗜酸为主 |
| 临床转化价值 | 高（贴近人类哮喘） | 有限 |
| 可模拟表型 | 炎症、重塑、激素抵抗、衰老 | 仅急性炎症 |
🔍 一张图读懂尘螨免疫激活机制：
① 几丁质外壳 → 激活固有免疫（TLR2/CLRs）；
② 粪球+LPS → 提供“天然佐剂"效应，无需额外添加铝佐剂；
③ Der p/Der f抗原表位 → 直接诱导Th2适应性免疫。
三者协同自主致敏，是尘螨模型临床贴合度远超OVA的核心原因
图1：屋尘螨(HDM)复合变应原激活免疫的分子基础[1]
| 模型类型 | 实验材料 | 核心用途 |
|---|---|---|
| 体外人鼻上皮模型（HNEpC） | 原代HNEpC + Der p/Der f提取物 | 上皮损伤、固有炎症、衰老、自噬、UPR、MMP、脂质介质（ELV34）药物筛选 |
| 体内小鼠哮喘模型 | 雌性BALB/c + Der p/Der f粗提物 | 气道高反应（AHR）、整体炎症、气道重塑、体内药效评价 |
| 双重尘螨混合模型 | Der p:Der f=1:1混合提取物 | 模拟临床双重致敏人群，通用机制、广谱药物筛选 |
基于2021年Preprints研究[2]，人鼻上皮细胞（HNEpC）是尘螨过敏体外金标准模型，可验证脂质介质Elovanoid 34（ELV34）的抗炎、抗衰老、抑制自噬/UPR/MMP的治疗作用。
细胞：原代人鼻上皮HNEpC（PromoCell C-1260）
刺激物：Der p提取物（abs47039044）、Der f提取物（abs47039045）
混合组配置：15 μg/mL Der p + 15 μg/mL Der f（终浓度30 μg/mL）
培养基：气道上皮专用wan全培养基 + 双抗
干预药物：ELV34（终浓度500 nM，文献标准给药浓度）
检测试剂：LDH细胞毒性试剂盒(abs580236)、PrestoBlue活力试剂、炎症因子ELISA、自噬/UPR/MMP/衰老qPCR引物
铺板培养：HNEpC接种培养至80%汇合度（约3d），筛选状态饱满、无漂浮死细胞的细胞用于实验；限定P2-P3代次使用。
分组干预：设置空白对照组、Der p组、Der f组、1:1混合尘螨组；统一终浓度30 μg/mL刺激；药物组：尘螨刺激30 min后加入ELV34（500 nM）共孵育24h；设置单独ELV34空白给药对照、PBS溶剂对照。
样本收集与检测
细胞上清：ELISA检测IL-1β、IL-6、IL-8、CXCL1、CCL2、VEGF、IL-10
细胞沉淀：qPCR检测自噬（ATG3/5/7、Beclin1）、UPR（ATF6、CHOP、IRE1）、MMP（MMP2/9/12）、衰老（p21/p16/p27）
细胞功能学：LDH细胞毒性、PrestoBlue细胞活力、β-半乳糖衰老染色
尘螨刺激后：细胞活力下降，LDH释放升高（上皮屏障损伤）；
促炎因子（IL-1β、IL-6、IL-8、CXCL1、CCL2、VEGF）显著上调，抗炎因子IL-10下调；
自噬、UPR、MMP、衰老相关基因转录水平显著升高；
β-半乳糖阳性衰老细胞数量大幅增加；
ELV34干预验证表型（文献核心结论）：ELV34可下调所有促炎因子、恢复IL-10水平，抑制衰老、自噬、UPR、MMP通路基因表达，保护鼻上皮细胞免受尘螨损伤[2]。
实验动物：5~6周龄雌性BALB/c（雌性炎症反应更稳定，重复性高）
刺激试剂：Der p/Der f提取物 + 氢氧化铝佐剂
造模方式：经典「腹腔致敏+滴鼻激发」双阶段模型
检测样本：BALF、肺组织、血清、肺功能参数
| 阶段 | 时间节点 | 操作方式 | 给药剂量 |
|---|---|---|---|
| ①全身致敏 | 第0、12天 | 腹腔注射（尘螨+Al(OH)₃乳化液） | 100 μg/只 |
| ②短期激发 | 第18~23天（每日1次） | 鼻腔滴注（生理盐水稀释） | 25 μg/只 |
| ③慢性强化 | 第25~35天（隔日1次） | 鼻腔滴注维持刺激 | 25 μg/只 |
| ④终点检测 | 第36天 | 取材检测各项指标 | — |
⚠️ 仅完成①②阶段仅能构建急性炎症模型，无胶原沉积、气道重塑表型；研究纤维化、重塑必须完成第③阶段慢性强化刺激！
| 检测项目 | 核心检测内容 |
|---|---|
| 肺功能（FlexiVent） | 乙酰甲胆碱梯度刺激(6/12/24mg/mL)，检测Rrs、Rn、G、H |
| BALF分析 | 总细胞计数+细胞分类；中性粒细胞弹性酶染色 |
| 肺组织病理 | H&E炎症评分、PAS黏液评分、IHC胶原/纤连蛋白/MMP定位 |
| 肺匀浆ELISA | IL-5、IL-13(Th2)、IL-17A(Th17)、IL-33、TSLP、MCPT-1、eotaxin |
| 血清学指标 | 总IgE、尘螨特异性IgG1/IgG2a（判断Th1/Th2免疫平衡） |
💡 参数速解：Rrs（总气道阻力）、Rn（中央气道阻力）=气道堵塞程度；G（组织阻尼）=炎症粘滞性；H（组织弹性）=肺纤维化/组织僵硬核心指标，是Der f重塑更严重的关键证据。
无需腹腔致敏，每周连续5天滴鼻刺激（25 μg/只），持续5周；
干预组造模前7天开始给药，全程同步干预；
终点检测：BALF炎症、肺组织病理评分、血清IgE、肠道菌群。
四项缺一不可：①肺功能AHR显著升高（Rrs/Rn/G/H均高于空白组）；②BALF炎症细胞总数、嗜酸/中性/淋巴细胞升高；③气道炎症浸润、黏液分泌增加、重塑蛋白上调；④肺组织Th2/Th17因子、血清IgE显著升高。
依据Wang等2020平行对照研究[4]，两种尘螨病理表型差异极大，直接决定实验结论方向：
| 对比维度 | Der p（屋尘螨） | Der f（粉尘螨） |
|---|---|---|
| 优势炎症细胞 | 中性粒细胞显著增多（混合型炎症） | 嗜酸粒细胞为主（经典Th2型炎症） |
| 关键细胞因子 | IL-17A↑↑、TSLP↑↑、MCPT-1↑ | IL-33↑、IL-13↑（IL-17A/TSLP无显著差异） |
| 激素敏感性 | 天然激素抵抗表型 | 对糖皮质激素响应良好 |
| 气道重塑程度 | 轻度重塑，MMP9/12低表达 | 重度纤维化重塑，MMP9/12↑↑ |
| 肺功能特征 | 气道阻力与Der f无差异 | 组织弹性H显著升高（小气道硬化） |
| 对应临床人群 | 南方潮湿地区、重症/难治哮喘 | 北方干燥地区、轻中度Th2哮喘 |
| 推荐研究方向 | 激素抵抗、Th17通路、肥大细胞活化 | 气道纤维化、MMP机制、抗重塑药物 |
激素抵抗用Der p，纤维重塑选Der f；双重致敏1:1，体外细胞任你挑。
| ❌ 常见错误 | ✅ 标准化解决方案 |
|---|---|
| 使用雄性小鼠造模 | 强制选用雌性BALB/c，雄性炎症应答弱、重复性极差 |
| 省略慢性强化阶段 | 必须完成25-35日隔日刺激，无该步骤无气道重塑表型 |
| HNEpC高传代使用 | 仅限P2-P3代，传代≥4代丧失尘螨应激应答能力 |
| 单一组尘螨下结论 | 机制研究必须设置Der p/Der f/混合/空白四组对照 |
| 仅检测嗜酸粒细胞判定表型 | Der p中性粒占比高，会掩盖嗜酸变化，需全细胞分类统计 |
| 使用非标准化提取物 | 采购商业化标定活性提取物，规避批次间活性差异 |
参考文献
[1] Gregory LG, Lloyd CM. Orchestrating house dust mite-associated allergy in the lung. Trends Immunol. 2011;32(9):402-411.
[2] Resano A, et al. Elovanoid 34 Reduces Proinflammatory Cytokines and Arrest the Expression of Genes That Drive Senescence, Autophagy, UPR, MMPs and Inflammation in Human Nasal Cells Exposed to HDM. Preprints 2021, 2021030663.
[3] Li L, et al. Prophylactic effects of oral administration of Lactobacillus casei on house dust mite-induced asthma in mice. Food Funct. 2020;11(10):9272-9284.
[4] Wang W, et al. Similarities and differences in sensitisation with Der f and Der p in murine asthma model. Cell Immunol. 2020;348:104038.
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