电泳缓冲液：原理、类型与应用实验全指南

在分子生物学实验室中，电泳是分离、鉴定核酸和蛋白质的核心技术，而电泳缓冲液作为电泳系统的“血液"，不仅是电流的导体，更是维持样品稳定性和结果可重复性的关键因素。

无论是DNA指纹分析、基因克隆验证，还是蛋白质组学研究，选择合适的电泳缓冲液都直接关系到实验的成败。本文将带您深入了解这种不可huo缺的实验室试剂，揭示其背后的科学原理及应用实践。

01 理解电泳缓冲液

电泳缓冲液是进行分子电泳时所使用的缓冲溶液，它是核酸、蛋白质凝胶电泳系统的一个重要组成，承担着电泳场中的导体的角色，同时也是维持电泳系统恒定pH值的必要条件。

在电泳过程中，缓冲液的成分及其离子强度直接影响物质的电泳迁移率。

想象一下，在没有缓冲液的普通水中进行电泳，将会面临诸多问题：pH值急剧变化、热量无法有效分散、样品可能降解或沉淀。

而优质的电泳缓冲液通过其精确配制的化学成分，有效地解决了这些问题，为电泳创造了稳定可靠的环境。

02 电泳缓冲液的关键作用

维持稳定pH环境

电泳过程中，阳极和阴极都会发生电解反应——阳极发生氧化反应（4OH⁻-4e⁻→2H₂O+O₂），阴极发生还原反应（4H⁺+4e⁻→2H₂）。

长时间的电泳将使阳极变酸，阴极变碱。一个好的缓冲系统具有较强的缓冲能力，能使溶液两极的pH保持基本不变。

提供适当导电性

电泳缓冲液使溶液具有一定的导电性，以利于DNA分子的迁移。例如，一般电泳缓冲液中应含有0.01-0.04mol/L的Na⁺离子。

Na⁺离子浓度太低时电泳速度会变慢；太高时则会造成过大的电流使胶发热甚至熔化。

保护样品完整性

电泳缓冲液中的EDTA可螯合Mg²⁺离子等二价阳离子，防止电泳时激活DNA酶及Mg²⁺离子与核酸生成沉淀。加入浓度通常为1-2mmol/L。

这重保护机制确保了样品在电泳过程中不会降解或发生不必要的化学反应，对于获得清晰可靠的结果至关重要。

03 常见电泳缓冲液类型及其特性

TAE缓冲液

TAE是使用最guang泛的缓冲系统。其特点是超螺旋在其中电泳时更符合实际相对分子质量（TBE中电泳时测出的相对分子质量会大于实际分子质量）。

而且，双链线状DNA在其中的迁移率较其他两种缓冲液快约10%，电泳大于13kb的片段时用TAE缓冲液将取得更好的分离效果。

此外，回收DNA片段时也易用TAE缓冲系统进行电泳。TAE的缺点是缓冲容量小，长时间电泳（如过夜）不可选用，除非有循环装置使两极的缓冲液得到交换。

TBE缓冲液

TBE的特点是缓冲能力强，长时间电泳时可选用TBE。当用于电泳小于1kb的片段时，TBE的分离效果更好。

但TBE用于琼脂糖凝胶时易造成高电渗作用，并且因与琼脂糖相互作用生成非共价结合的四羟基硼酸盐复合物而使DNA片段的回收率降低，所以不宜在回收DNA片段的电泳中使用。

TPE缓冲液

TPE的缓冲能力也较强，但由于磷酸盐易在乙醇沉淀过程中析出，所以也不宜在回收DNA片段的电泳中使用。

其他专用缓冲液

除了上述三种常见的核酸电泳缓冲液，还有多种针对特定需求的缓冲液：

MOPS缓冲液用于RNA的电泳，而Tris-甘氨酸-SDS缓冲液则主要用于蛋白质的SDS-PAGE电泳，其组成通常为25mmol/L Tris碱、192mmol/L甘氨酸、0.1%SDS，pH8.3。

在醋酸纤维素薄膜电泳中，常选用pH8.6的缓冲液，可用于分离血清蛋白等样品。

04 电泳缓冲液的实验应用

核酸分析实验

在核酸实验中，选择合适的缓冲液对分离效果至关重要。TAE缓冲液适用于大片段DNA的分离（尤其是大于13kb的片段）和DNA回收实验。

TBE缓冲液则更适合小片段DNA（小于1kb）的分离和长时间电泳。

例如在PCR产物的鉴定中，根据片段大小选择合适的缓冲液能获得更清晰的条带和更准确的分子量判断。

蛋白质研究

在蛋白质电泳中，不同的缓冲系统满足不同的分离需求。Tris-甘氨酸-SDS缓冲液是SDS-PAGE的标准缓冲液，用于蛋白质分子量测定和纯度分析。

在醋酸纤维素薄膜电泳中，采用pH8.6的缓冲液，可成功分离血清蛋白的各组分。

而在双向电泳中，样品通常溶于含有尿素、硫脲、CHAPS、两性电解质等成分的复杂水化上样缓冲液中，以实现基于等电点和分子量的双重分离。

免疫学实验

在对流免疫电泳等免疫学实验中，TAE缓冲液可替代传统的巴bi妥-巴bi妥钠缓冲液，且表现出电泳沉淀线更为明显、试剂安全性较高、实验成本较低的优点。

同样，硼酸缓冲液也可替代有毒的巴bi妥缓冲液用于血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳，离子强度为0.08的硼酸缓冲液可以分离出5条清晰的蛋白区带，且电泳10次后仍然效果良好。

05 缓冲液的选择与使用指南

如何选择合适的缓冲液

选择电泳缓冲液时，需要考虑多个因素：

• 样品类型：核酸还是蛋白质？DNA常用TAE或TBE，RNA常用MOPS，蛋白质则多用Tris-甘氨酸系统

• 分离片段大小：大片段DNA（>13kb）优选TAE，小片段DNA（<1kb）优选TBE

• 电泳时间：短时间电泳可用TAE，长时间电泳宜选TBE

• 后续处理：如需回收DNA片段，应避免使用TBE和TPE

配制与保存要点

TAE缓冲液（50×储存液）的配制：称量氨基丁三醇242g，Na₂EDTA·2H₂O 37.2g于1L烧杯中；向烧杯中加入约600ml去离子水，充分搅拌均匀；加入57.1ml的冰乙酸，充分溶解；使用时稀释50倍即1×TAE Buffer。

TBE缓冲液（10×储存液）的配制：称量氨基丁三醇108g，Na₂EDTA·2H₂O 7.44g，硼酸55g于1L烧杯中；加入约700ml去离子水，搅拌均匀；用NaOH调pH至8.3，加去离子水定容至1L后，室温保存。

电泳缓冲液一般可在室温下保存数月，但稀释后的工作液建议新鲜配制以确保最jia效果。若发现沉淀或微生物污染，应丢弃并配制新鲜溶液。

从基础的DNA琼脂糖凝胶电泳到复杂的蛋白质组学研究，从传统的醋酸纤维素薄膜到高通量的毛细管电泳，电泳缓冲液的选择与配制始终是影响实验结果的关键因素。

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