牛血清白蛋白（BSA）在生化实验中有广泛的应用, 例如在WB实验中加入BSA, 通过提高溶液中蛋白质的浓度，对酶起保护作用。防止酶的分解和非特异性吸附，能减轻有些酶的变性，减轻不利环境因素如加热，表面张力及化学因素引起的变性的。具体的WB实验操作和BSA在实验中的应用爱必信分享如下：
一．蛋白质的样品制备：
取心肌组织50mg，待组织块自行溶解，用滤纸吸去其表面水分，将组织块放入玻璃匀浆器球状部位，用组织剪尽量将其剪碎，将剪碎的心肌组织放入玻璃匀浆器的杆状部，按1mlRIPA+10ulPMSF/100mg心肌组织的比例加入RIPA和PMSF（先加RIPA再加PMSF），将玻璃匀浆器插入冰中，匀浆约30分钟。
将心肌组织匀浆转移到离心管中，4℃12000g离心5分钟，收集上清（如有粘稠物进一步用超声处理），样品分装冻存于-20℃备用。
二 .测定蛋白浓度：
1． 按50：1配置BCA工作液。
2.2 10ulC液（蛋白标准）+90ulPBS液稀释成0.5mg/ml的蛋白标准液。
2.3 分别以0、1、2、4、8、12、16、20ul将蛋白标准液加入96孔板的第1~8标准孔中，在其他样品孔中加入10ul待测样品。
2.4 分别加PBS定容至20ul。
2.5 各孔中加入200ulBCA工作液，室温放置2小时。
2.6 用酶标仪测定蛋白浓度：测定A562，依标准曲线算出蛋白浓度。
三． SDS-PAGE电泳：
3.1 制 胶: 按比例配制分离胶，缓缓地摇动溶液，使激活剂混合均匀，将凝胶溶液平缓地注入两层玻璃极中，再在液面上小心注入一层水，以阻止氧气进入凝胶溶液中，静置40min。同前按比例配制浓缩胶，但混匀溶液时不要过于剧烈以免引入过多地氧气。吸去不连续系统中下层分离胶上的水分，连续平稳的注入凝胶溶液，然后小心插入梳子并注意不得在齿尖留有气泡，静制60min以上以保证*聚合。
3.2 预电泳： 将聚合好的凝胶安置于电泳槽中，小心拔去梳子，加入电泳缓冲液后低电压10-20V的预电泳20-30min。（目的是清除凝胶内的杂质， 疏通凝胶孔径以保证电泳过程中电泳的畅通）。
3.3 样品准备：首先计算上样体积，然后按样品：上样buffer=4：1的比例加入上样bufer混匀，沸水煮10分钟，冰上5分钟。
3.4 加 样： 预电泳后依次加入标准品（Marker）和待分析样品。（加样时间要尽量短，以免样品扩散，可在未加样的孔中加入等量的样品缓冲液避免边缘效应。每个泳道加5ul 。
3.5 电 泳： 加样完毕，选择80V恒压进行电泳，电泳直至溴酚蓝染料前沿到达两胶交界处（一般约20分钟），更换至100V恒压电泳，电泳直至溴酚蓝染料前沿下至凝胶末端处，即停止电泳（一般约为1小时20分钟）。
四．转 膜：
4.1 切胶：将电泳完毕的胶完整的放在盛有电转液的玻璃皿中，将目的蛋白所在区域切下来，测量其长宽，并记录。
4.2 剪膜和滤纸：按胶的尺寸剪膜和滤纸（滤纸长宽较凝胶小0.5~1mm，PVDF膜长宽较凝胶大0.5~1mm），滤纸浸入盛有电转液的玻璃皿中10秒钟，膜放入盛有10%甲醇的玻璃皿中10秒钟，然后将两者都放入盛有去离子水的玻璃皿中3分钟，进一步放入盛有电转液的玻璃皿中3分钟。
4.3 向电转槽中倒入部分电转液，将海绵浸入。按如下顺序制作“三明治”（注意避免两边滤纸相互接触，以免发生短路）。从正极到负极按如下顺序排列：正极-海绵-双层滤纸-PVDF膜-凝胶-双层滤纸-海绵-负极。（其中不能留有气泡）卡紧转膜板，电转槽中倒满电转液，将转膜板浸入电转槽中，注意正负极要正确。插上电源，设定恒流20mA转膜，4℃冰箱中过夜。
五、膜的封闭: 用TBST液洗涤印迹膜10分钟x2次。放入5%BSA（abs49001012）封闭液内，摇床震动，70转/分钟，室温封闭1小时30分钟。
六、一抗孵育：
6.1 配制一抗：按相应抗体的效价加入一抗稀释液，一抗稀释液按0.05% TBST（ml）： BSA（g）=20：1配制。
6.2一抗孵育：将封闭后的膜放入杂交袋中，加入一抗约1ml，室温摇床（70转/分钟）孵育1小时30分钟。
6.3 用TBST洗涤膜10分钟x3次。
七、二抗孵育：
7.1 配制二抗：按相应抗体的效价加入二抗稀释液，二抗稀释液按0.05%TBST（ml）： BSA（g）=20：1配制。
7.2 二抗孵育：将一抗孵育后的膜放入二抗中，室温摇床（70转/分钟）孵育1小时30分钟。
7.3 用TBST洗涤膜10分钟x3次。
八、ECL显色
8.1 配制ECL工作液：在避光的容器中按A液：B液=1：1的比例配制。
8.2 按膜：工作液=10cm2：1ml的比例将ECL工作液覆盖到膜表面，放置1~2分钟后在凝胶成像系统中观察、拍照。
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